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martes, 3 de junio de 2014

Observación al microscopio



Observación al microscopio
La observación  es el último paso de la técnica histológica, en la cual una vez obtenida la laminilla histológica se observara al microscopio, primeramente se enfocara con la lupa a 4x, se prosigue con el lente de 10x y por último se observara el tejido en 40x.
Los resultados obtenidos mediante la tinción al ser observadas al microscopio pueden presentar las siguientes coloraciones:
X  Núcleo de azul.
X  Citoplasmas y fibra colágenas de rojo o rosa.

X  Eritrocitos de rojo brillante.

Montaje


Montaje

Este paso consiste en colocar sobre el corte, un cubreobjetos bien limpio con una gota del medio de montaje, evitando que se formen burbujas de aire, el medio de montaje más frecuentemente utilizado es el Bálsamo de Canadá o resina.
Se deja secar la resina  y ya está lista la preparación para ser observada.

El objetivo del montaje es facilitar el examen microscópico y conservar las preparaciones.

Tren de Tinción de Hematoxilina y Eosina

Técnica:
La canastilla con las láminas se someten a baños en las diferentes soluciones:
Técnica Estandarizada
1.    Xilol - 15 minutos
2.    Xilol - 10 baños
3.    Alcohol absoluto - 10 baños
4.    Alcohol absoluto - 10 baños
5.    Alcohol 96° - 10 baños
6.    Alcohol 96° - 10 baños
7.    Agua corriente - 10 baños
8.    Hematoxilina (5 min. Estandarizar)
9.    Agua corriente - 10 baños
10.  Alcohol ácido (baño rápido) 
11.  Agua corriente -10 baños
12.  Carbonato de Litio - Estandarizar
13.  Agua corriente - 10 baños
14.  Alcohol 96° - 10 baños
15.  Eosina (Estandarizar)
16.  Alcohol 96° - 10 baños
17.  Alcohol 96° - 10 baños
18.  Alcohol Absoluto - 10 baños
19.  Alcohol absoluto (Se seca la laminillaen el horno 2 min).
20.  Xilol - 10 baños
21.  Xilol 

Tinción

Tinción
Se llama tinción al procedimiento mediante el cual se tiñen las preparaciones histológicas, fundándose en la afinidad que para determinados agentes colorantes poseen los diversos componentes de la célula y substancias intercelulares, siendo indispensable que nos se destiñen con un lavado ulterior efectuado con el disolvente empleado para preparar la solución.
El término  de agente colorante es utilizado en un amplio sentido, e incluye a todas las substancias que son capaces de combinarse con los tejidos y mejorar la visibilidad de sus componentes al impartirles color, siendo necesario que no tiñan difusamente por igual a los componentes de un preparado, sino que se fije selectivamente en determinados elementos en forma constante y regular.
Los colorantes básicos reaccionan con los grupos aniónicos de los componentes texturales, que son los grupos fosfato de los ácidos nucleicos (ADN y RNA), los grupos sulfato de los glucosaminoglucanos y los grupos carboxilo de las proteínas. la reacción de estos grupos varía según el ph.
La hematoxilina no es un colorante básico en sentido estricto. se la utiliza con un mordiente (intermediario), entre el componente textural y la anilina, y es debido a este que la coloración con hematoxilina se asemeja a la tinción que produce un colorante básico. la unión en el complejo tejido – mordiente – hematoxilina, no consiste en un simple enlace, y cuando la hematoxilina se coloca en agua no se disocia del tejido, sino que permanece firmemente adherida. a causa de esto, la hematoxilina se presta para aquellos procedimientos tintoriales en los que a ella le sigue la eosina u otros colorantes ácidos.
Los colorantes básicos verdaderos no suelen usarse en secuencia en donde el colorante básico es seguido por uno ácido, por que la anilina básica tiende a disociarse del tejido durante los lavados posteriores en soluciones acuosas.
Un colorante ácido lleva una carga negativa en la porción coloreada de la molécula y su fórmula general se representa:
na+ anilina-
Los colorantes ácidos se unen primariamente a los componentes texturales por medio de enlaces electrostáticos de manera similar pero opuesta a la de los colorantes básicos. las anilinas ácidas reaccionan con grupos catiónicos, como los grupos amino ionizados de las proteínas.
Cualquier componente de los tejidos que reaccione con un colorante básico (o con hematoxilina) se dice que es basófilo y que presenta basofilia. estos componentes son:
X  la heterocromatina y los nucleolos del núcleo por los grupos fosfato ionizados.
X  ergatoplasma (parte del citoplasma) por grupos fosfato ionizados.
X  matriz del cartílago por grupos sulfato ionizados.

Los componentes texturales que se tiñen de colorantes ácidos se dice que son acidófilos y que presentan acidofilia.
Son acidofilos:
X  la mayor parte del citoplasma no especializado.
X  filamentos citoplasmáticos.  
X  fibras extracelulares.
Todos estos debidos a grupos amino ionizados.
Los colorantes más utilizados son la HEMATOXILINA Y la EOSINA.
La EOSINA es un colorante ácido y sus propiedades tintoriales pueden ser explicadas sobre la base de lo que se sabe acerca de la acción de las anilinas ácidas. La HEMATOXILINA aunque no es un colorante básico, posee propiedades muy semejantes a las anilinas básicas.
COLORANTES:
X  Básicos: HEMATOXILINA (Núcleo Azul)

X  Ácidos: EOSINA (Citoplasma Rosa)

Desparafinado

Desparafinado


Después de extender y montar el corte en una laminilla el corte debe ser secado para evitar su desprendimiento y desparafinar los cortes, la desparafinación se lleva acabo introduciendo las laminillas acomodadas en una canastilla de portaobjetos, a la estufa a una temperatura de 60ºC por 30 minutos.

Afilado de cuchillas

Afilado de cuchillas

Se lleva acabo mediante un aparato llamado afilador de cuchillas el cuál tiene uso exclusivo para la afilación.

Este se realiza antes de empezar a realizar la técnica ya que las cuchillas deben de estar afiladas para que el corte que se hacen en la microtomía sea un corte fino.

Los pasos son los siguientes para afilar las cuchillas:
X  Se lija la superficie de la cuchilla para retirar el oxido sin tocar el filo.
X  Se coloca el vidrio esmerilado para limar y sobre de este se coloca el abrasivo ya sea grueso o fino ( haciendo una línea recta y sobre de esta un zig-zag).

X  Se le da el tiempo correspondiente que se requiera para su afilación

Microtomía y baño de flotación


Los tejidos deben ser cortados en láminas delgadas para posibilitar su observación con el microscopio, los instrumentos utilizados para la obtención de cortes son los micrótomos. Básicamente, todos los tipos de micrótomo constan de una navaja muy afilada que seccionará el taco histológico y un mecanismo de avance automático regulable de a unos pocos micrones (usualmente entre 5 y 8 micras).

El espesor de los cortes  se hace mediante un tornillo micrométrico, sus pasos de rosca son muy estrechos. Al avanzar, empuja el bloque portamaterial por una rampa oblicua al plano de deslizamiento de la cuchilla. Para hacerlo avanzar hay una palanca lateral, una especie de brazo y un tope.
Elegido el espesor que se desea dar a los cortes, se desliza la cuchilla. Se hace el primer corte.

Los cortes que naturalmente salen ondulados se extienden y alisan por completo mediante el agregado al baño de flotación a 45ºC al cual se le agrega grenetina para que se fije adecuadamente al portaobjetos al momento de recoger el tejido.

El corte puede ser sujetado por una aguja de montaje, se levanta el porta y se extrae del agua junto con el corte en el centro del porta.